Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Медицина и образование / Профилактика резидуального эхинококкоза органов брюшной полости и забрюшного пространства / Содержание работы / Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Страница 4

Суть биологической пробы заключалась в имплантации фрагмента хитиновой оболочки площадью 1 см2, подвергнутого во время операции антипаразитарной обработке, в брюшную полость крысы. Всего биопроба поставлена 19 белым нелинейным крысам, из которых 3 умерли в ближайшем послеоперационном периоде (отсев). Еще 2 крысы умерли в течение месяца после постановки биопробы. При их вскрытии новые кисты в брюшной полости не были выявлены. Оставшиеся 14 крысы были усыплены передозировкой эфира через 3 месяца после постановки биопробы. При вскрытии в брюшной полости обнаруживались спайки вокруг несколько набухшего хитина. Эхинококковые кисты при этом выявлены не были, что говорило о надежности обеззараживающего воздействия. Результаты биопробы в контроле свидетельствуют, что при имплантации заведомо необеззараженного фрагмента хитина развиваются новые кисты (разумеется, что кисты развиваются из оставшихся на хитиновой оболочке участков герминативного слоя с зародышевыми элементами).

Таким образом, исход операции практически не зависит от толщины перикистозной паренхимы и диаметра кисты (с учетом, что нами анализировались кисты диаметром 1–13 см). Предложенная методика чрескапсульного пункционного лечения оказалась выполнимой вне зависимости от глубины расположения кисты, а антипаразитарная обработка оказалась надежной.

Разработанный способ апаразитарной эвакуации содержимого кисты и пункционный метод лечения интрапаренхиматозных кист применены при хирургическом лечении 18 больных эхинококкозом. Оставшиеся 19 пациентов с солитарным и множественным эхинококкозом оперированы традиционной хирургической техникой (контрольная группа). При средних и больших кистах на этапе антипаразитарной обработки эхинококковых кист применялся способ непрерывного замещения гидатидной жидкости на антипаразитарный раствор. Ультразвукового контроля при производстве пункции не требовалось.

Данный способ антипаразитарной обработки применен всего у 13 больных. Осложнений, связанных с особенностью процедуры пункции двухпросветной иглой и непрерывной инфузии–аспирации, не отмечено. После полного опорожнения кист последние вскрывались, удалялась хитиновая оболочка, фиброзная полость протиралась 70% спиртом, после чего одним из методов ликвидировалась остаточная полость.

При интрапаренхиматозной локализации кист (когда визуально не дифференцировалась фиброзная капсула) в течение всей процедуры – от пункции до дренирования – проводился УЗИ–контроль в режиме реального времени. Всего методика применена у 5 больных (муж. 4, жен. 1) в возрасте 35 – 66 лет. В качестве антипаразитарного раствора применялся 20–30% раствор NaCl. Вся процедура промывания полости хитиновой оболочки продолжалась 4–5 минут. Расход гипертонического раствора зависел от объема кисты и в среднем составил 100–200 мл на одну кисту диаметром до 3–3,5 см. Во всех случаях эхинококкоз был множественным, причем ряд кист имел размеры более 5 см, требующие классического способа эхинококкэктомии. Однако и в этих случаях применена методика непрерывного замещения содержимого кисты на антипаразитарный раствор с последующим вскрытием и обработкой кисты традиционным способом.

Всего чрескапсульным пункционным способом удалось обработать 7 кист диаметром 1,5–3,4 см и локализацией в 7–8–1 сегментах (5 кист) и по одной кисте в 6-й и на границе 8 и 5 сегментов. Во всех случаях наименьшая толщина паренхимы над кистой была 1–2,5 см. Неудачных результатов не было. Ни в одном случае в аспирируемой жидкости желчь не имелась. Спустя 4–5 минут вместо гипертонического раствора вводился 5–15 мл 70–95% спирта (в зависимости от размеров кисты). Перед извлечением иглы из кисты инфузия прекращалась и вся жидкость аспирировалась.