Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Медицина и образование / Профилактика резидуального эхинококкоза органов брюшной полости и забрюшного пространства / Содержание работы / Хирургическая техника при интрапаренхиматозной локализации мелких эхинококковых кист

Страница 1

Суть эксперимента заключалась в апробации различной оперативной техники эхинококкэктомии на утильных препаратах печени крупного и мелкого рогатого скота с акцентом внимания на небольшие и глубоко расположенные кисты. Эксперименты проведены всего на 46 органах, где было выявлено 65 кист размерами от 1 до 13 см. Кисты выявлялись визуально, пальпацией, а наиболее мелкие при ультразвуковом исследовании.

Для моделирования различной глубины расположения кист в органе доступ к кисте осуществлялся с различных точек поверхности органа. После проведения эксперимента ткань печени рассекалась и измерялась толщина перикистозной паренхимы, откуда был осуществлен доступ к кисте, оценивалась надежность обеззараживания.

Один из ключевых моментов операции при интрапаренхиматозной локализации мелких кист – надежность обеззараживания, поскольку при этих кистах отсутствует возможность полноценного визуального контроля сохранения в остаточной полости зародышевых элементов, способных трансформироваться в рецидивные кисты. Данный аспект проблемы после завершения эхинококкэктомии в эксперименте изучался путем микроскопии содержимого кисты и постановкой биологической пробы на белых нелинейных крысах (учитывались только кисты диаметром менее 3,5 см – всего 19 кист).

Традиционная техника эхинококкэктомии (контрольная группа операций) при интрапаренхиматозной локализации моделировалась следующим образом: после ревизии печени (УЗИ) без предварительной пункции производится осторожное рассечение ткани печени над кистой, проводя тщательный гемостаз прошиванием паренхимы. После доступа к фиброзной капсуле проводится пункция, аспирация жидкого содержимого, инфузия гермицида (глицерин 80% или 30% NaCl), реаспирация обеззараженной эхинококковой жидкости и вскрытие фиброзной капсулы. После удаления хитиновой оболочки и повторной обработки фиброзной полости фиброзную капсулу вместе с перикистозной паренхимой обшивают для гемо– и холестаза. Устанавливается дренаж в полость и фиксируется к ране печени. Узловыми швами создается герметичность остаточной полости. Операция могла быть начата и в другой последовательности: после ревизии печени пунктируется киста через толщу паренхимы, аспирируется содержимое, после чего, не вынимая иглу, полость заполняется таким же объемом антипаразитарного раствора (30% NaCl). Дальше техника такая же, как при первом варианте.

В том или ином варианте проведено моделирование эхинококкэктомии на 27 кистах (в 17 органах) размерами от 2,2 см до 12 см. При кистах менее 2,2 см в принципе применить методику не удавалось, поскольку манипулировать иглодержателем и иглой не представлялось возможным из-за вероятности нанесения дополнительной травмы печени. В некоторых случаях результаты операции были «неудачными» в связи с: необходимостью формирования раны печени большей длины, чем диаметр кисты; случайным прорывом кисты или нарушении принципов апаразитарности; закупоркой просвета иглы на этапе антипаразитарной обработки; «потерей» кисты (смещение направления раневого канала) во время доступа к ней. Конечный результат (удачный, неудачный) привязывали к размеру кисты и толщине перикистозной паренхимы в направлении доступа к кисте.

Неудачные результаты операции наблюдались во всех случаях, когда размеры кисты были меньше толщины перипаразитарной паренхимы (6 кист), а также при толщине перипаразитарной паренхимы 3,3–4,2 см. При меньшей толщине перипаразитарной паренхимы (2,5–3,0 см) экспериментальная операция завершилась неудачно при кистах (3 кисты) диметром не более 4,5 см.